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干旱胁迫研究NMT标准化方案|中关村认证实验标准

 

 

H+流是如何贯穿水、肥两个方向成为研究核心思想的

 

 

 

瞬时干旱胁迫下水稻根部钙离子流速变化丨NMT实验奇想第13期

 

 

 

干旱胁迫对植物铵吸收会产生怎样的影响

 

 

 

 

 

1)Zhao C et al. Evolution of chloroplast retrograde signaling facilitates green plant adaptation to land. PNAS. 2019. 116 (11) 5015-5020.

 

2)Feng X et al. HvAKT2 and HvHAK1 confer drought tolerance in barley through enhanced leaf mesophyll H+ homoeostasis. Plant Biotechnol J. 2020. doi: 10.1111/pbi.13332.

 

3)Zhang X et al. Mesophyll cells’ ability to maintain potassium is correlated with drought tolerance in tea (Camellia sinensis). Plant Physiol Bioch. 2019. 136:196-203.

 

4)Pan J et al. An S-domain receptor-like kinase, OsESG1, regulates early crown root development and drought resistance in rice. Plant ence, 2019, 290:110318.

 

5)Yang J et al. Overexpression of TaLEA3 induces rapid stomatal closure under drought stress in Phellodendron amurense Rupr. Plant Science, 2018, 277.

 

6)Linlin H, et al. Ammonium uptake increases in response to PEG-induced drought stress in Malus hupehensis Rehd. Environmental and Experimental Botany. 2018. 151:32-42

 

7)Li T, et al. First cloning and characterization of two functional aquaporin genes from an arbuscular mycorrhizal fungus Glomus intraradices. New Phytologist, 2013, 197(2): 617-630.

 

 

 

 

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K+、Ca2+、H+、Cl-、NO3-、NH4+、IAA、H2O2

 

 

 

 

1)H2O2生理功能概述

 

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2)科研案例

诱导植物产生系统获得抗性、高度敏感抗性和热抗性;引起细胞衰老,诱导程序性死亡;参与ABA调控的气孔关闭;参与根的向地性、生长和不定根形成;细胞壁发育的信号分子;参与柱头和花粉粒的发育与相互作用;参与信号转导;调控基因表达。

 

例1:高温和干旱胁迫下,非损伤微测技术监测到发芽种子胚芽鞘的H2O2外排,结合ROS、丙二醛含量检测,及抗氧化酶活性分析,表明高温和干旱条件下ABA和ROS的积累,可以抑制水稻种子的萌发和生长。

 

Liu J et al. High temperature and drought stress cause abscisic acid and reactive oxygen species accumulation and suppress seed germination growth in rice. Protoplasma. 2019;256(5):1217-1227.

 

 

 

 

 

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1、动物样品

1)细胞

神经细胞、肿瘤细胞、巨噬细胞、淋巴细胞等

2)组织器官

肿瘤、皮肤、胃粘膜、胰岛、脑(海马体等)、胚胎(大鼠、鱼)、斑马鱼皮肤/鳃、耳蜗、心脏(香螺)、卵(鱼、鸡蛋、爪蟾)、骨骼、角膜、脊椎(豚鼠)、肌肉组织(肌纤维、心肌)

3)其它动物样品

珊瑚、螨虫、昆虫(果蝇幼虫的肠、蟑螂血脑屏障、按蚊、长红锥蝽)、蝌蚪、水蛭、蓝蟹(微感毛)、变形虫、水丝蚓

 

2、植物样品

1)营养器官

根:根、根毛、根瘤
茎:边材、心材、微管形成层、木质部
叶:表皮细胞、叶肉细胞、盐腺细胞、保卫细胞

2)生殖器官

花:花瓣、花瓣表皮细胞、花粉
种子:整体、胚
果实:果壳、果皮、果肉(苹果、柑橘)、籽粒、棉花纤维、棉桃

3)细胞:植物悬浮细胞、液泡

4)愈伤组织

 

3、微生物样品

酵母细胞、菌丝、菌落、微藻、细菌(大肠杆菌)

 

4、其它生物样品

周丛生物

 

5、非生物样品

金属、混凝土、泥沙、纳米材料、生物医药材料

 

 

 

非损伤微测技术最大的特点就是活体、无损检测,因此动植物材料在检测前,不需要任何的液氮速冻、染色、研磨处理等。

 

1、动物单细胞

因NMT是活体检测,故从培养箱中拿出来后,置于培养皿中,直接检测即可。

 

2、动物组织

因NMT是活体检测,无需提前处理。如检测部位天然暴露在外,如斑马鱼皮肤离子细胞、侧线毛细胞,直接检测即可。如检测部位位于体内,需在检测时暴露出检测部位(可采用麻醉的方式),后检测即可。

 

3、植物根茎叶等组织器官

天然暴露在外的组织器官,例如根、茎、叶的表面,无需任何处理,直接检测即可。水培、土培、砂培、平板培养均可。

 

4、植物原生质体/液泡

因NMT是基于微传感器/探针的非损伤检测,检测时不接触样品,故原生质体、液泡需要从组织或者细胞中,提取出来后检测。

 

5、植物叶片的表皮细胞、叶肉细胞、盐腺细胞、保卫细胞

无需提前处理。因这些细胞处于组织内部,故检测时采用撕取等方式,暴露出相应细胞即可。

 

6、植物花粉管

离体萌发:在培养皿中萌发一段时间后即可直接检测;在体萌发:将柱头置于培养皿中,待萌发一段时间后即可直接检测。

 

7、植物果实

无需提前处理。如待测部位位于果实内部,需在检测前暴露出相应部位即可。

 

8、植物悬浮细胞
无需提前处理。检测时,置于培养皿中检测即可。

 

 

 

 

 

即瞬时处理,是指在检测过程中,在正常测试液中瞬间加入所需的干旱胁迫溶液(PEG或甘露醇等溶液)的处理方法,目的是为了观察瞬间干旱胁迫下,样品短时间内的离子/分子的变化趋势,即短时效应。

 

2、预处理/提前处理好后检测
是指在干旱胁迫一段较长的时间后(数十分钟/数小时/数天),观察植物离子/分子进出的情况,即长时效应。

 

 

 

检测时,只要求待测部位浸于溶液中(无需整体都浸在溶液里)。

 

 

 

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可以送样检测。目前非损伤微测技术测试服务由中关村NMT产业联盟统筹管理,由遍布全国的25家NMT创新平台服务中心,提供检测服务。

 

 

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请直接联系旭月公司获取设备操作培训服务。

 

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关键词:NMT标准化方案、极性生长

 

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